利飛馳920190桿菌肽 BA 0.016-256說(shuō)明書

利飛馳920190桿菌肽 BA 0.016-256說(shuō)明書

說(shuō)明

MIC 試紙條是測(cè)定抗微生物藥對(duì)微生物的低抑菌濃度(MIC)和檢測(cè)耐藥性機(jī)制的一種定量分析法。

MIC 試紙條是具有特殊功能*的紙條,這些試紙條用預(yù)定濃度梯度的抗生素浸漬,其濃度梯度為傳統(tǒng) MIC 法的 15 個(gè)雙倍稀

釋液。

在試紙條的一側(cè),指明了 MIC 標(biāo)度(以 μg/mL 為單位)和抗微生物藥的標(biāo)識(shí)代碼。

對(duì) ESBL(廣譜 β-內(nèi)酰胺酶)和 MBL(金屬 β-內(nèi)酰胺酶)的檢測(cè),雙側(cè)梯度攜帶適當(dāng)?shù)脑\斷試劑。

MIC 試紙條有多種可選配置。每種配置均以 10、30 和 100 次試驗(yàn)的包裝供應(yīng)。

包裝內(nèi)容物

10次試驗(yàn)盒含有 10張?jiān)嚰垪l(逐個(gè)包裝于干燥劑封袋)和一份使用說(shuō)明書。

30次試驗(yàn)盒含有 30張?jiān)嚰垪l(逐個(gè)包裝于干燥劑封袋)和一份使用說(shuō)明書。

100次試驗(yàn)盒含有 10個(gè)干燥封袋(各裝有 10張?jiān)嚰垪l)和一份使用說(shuō)明書。這種 100次試驗(yàn)包也裝有一個(gè)存儲(chǔ)管。

方法原理

當(dāng) MIC 試紙條貼敷在接種的瓊脂表面時(shí),預(yù)形成的抗微生物指數(shù)梯度立即輸送到瓊脂基質(zhì)上。

在培養(yǎng) 18 小時(shí)或以上時(shí)間后,形成沿試紙條中心定位的一個(gè)對(duì)稱抑制性橢圓圈。MIC 是直接從標(biāo)度上讀取的,以抑制性

橢圓圈邊緣與 MIC 試紙條條帶交叉點(diǎn)的 μg/mL 值表示。對(duì)耐藥性檢測(cè)方法,也可能觀察到其它生長(zhǎng)/抑制模式。

組成

這些試紙條由高質(zhì)量紙張制成,每個(gè)試紙條均以預(yù)定濃度梯度的抗生素浸漬,其濃度梯度為抗生素的 15個(gè)雙倍稀釋液。

收集和保存樣品低抑菌濃度(MIC)測(cè)定用菌落是由培養(yǎng)基取得的,培養(yǎng)基預(yù)先用棉簽以待檢樣品涂抹。如果是混合菌落,在接種之前必須純化細(xì)菌菌株。

試驗(yàn)步驟

1.開(kāi)啟封袋前,先將封袋恢復(fù)至室溫,以便盡量減少試紙條上出 現(xiàn)凝結(jié)。

2.用棉簽取 4-5 個(gè)良好分離的和形態(tài)學(xué)類似的菌落+培養(yǎng)基,使之在 5mL 適當(dāng)懸浮培養(yǎng)基中懸浮。營(yíng)養(yǎng)要求較高的微生物應(yīng)懸浮在肉湯中,并在 15 分鐘內(nèi)使用。

3.與適當(dāng)?shù)?McFarland 標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)比濁度。

4.把無(wú)菌棉簽浸入肉湯培養(yǎng)基或其稀釋形式培養(yǎng)基中,使之靠試管壁擠壓,以除去多余的液體。

5.使之沿平板上所含的培養(yǎng)基表面拖動(dòng),以便獲得均勻的生長(zhǎng);吸收過(guò)量的水分吸收,確保該表面*干燥,再應(yīng)用試紙條。

6.把試紙條貼敷在瓊脂表面上,令 MIC 標(biāo)度向上,且試紙條的代碼面向平板的外部,用無(wú)菌鉗把它按壓在瓊脂表面上,確保

抗生素梯度的全部長(zhǎng)度試紙均*接觸瓊脂表面。一旦貼敷,不得移動(dòng)試紙條。

7.讓平板倒置,在對(duì)微生物適當(dāng)?shù)臈l件下進(jìn)行培養(yǎng)。

8.把未用的試紙條放在包裝中附帶的試管上。